Caracterización fenotípica y genotípica de aislamientos clínicos de los complejos de especies Cryptococcus neoformans y Cryptococcus gattii en Costa Rica

  • Cristian Mata-Delgado
  • Stefany Lozada-Alvarado
  • Norma T. Gross
  • Daniela Jaikel Víquez

Resumen

Introducción: La criptococosis es una infección micótica oportunista causada por levaduras del género Cryptococcus spp. Mediante técnicas moleculares se ha logrado establecer que el complejo de especies C. neoformans está conformado por dos especies: C. neoformans y C. deneoformans y el complejo de especies C. gattii por cinco: C. gattii, C. bacillisporus, C. deuterogattii, C. tetragattii y C. decagattii. Además, existen híbridos entre las especies. Métodos: Se analizaron un total de 36 aislamientos clínicos costarricenses. Los hongos fueron caracterizados fenotípicamente mediante la presencia de cápsula, crecimiento a 37 °C, ureasas y lacasas y crecimiento en agar canavanina, glicina, azul de bromotimol (CGB) y genéticamente mediante la técnica del polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción (RFLP, por sus siglas en inglés) del gen URA5. Resultados: Todas las levaduras analizadas presentaron cápsula, crecieron a 37 °C, sintetizaron ureasas y lacasas; el 8.34 % (n = 3) crecieron en agar CGB. Al analizar los patrones de restricción se encontró que la especie más frecuente fue C. neoformans n = 33 (91.67 %) (patrón molecular VNI (n = 22; 61.11 %) y VNII (n = 11; 30.56 %)), seguido de C. gattii (VGI) n = 2 (5.56 %) y VGIV (C. tetragattii o C. decagattii) n = 1 (2.78 %). Conclusiones: se demuestra por primera vez la presencia de los patrones moleculares VGI y VGIV en Costa Rica. Por lo tanto, se recomienda la implementación del medio CGB en los distintos laboratorios clínicos ya que la especie incide en la efectividad del tratamiento.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Biografía del autor/a

Daniela Jaikel Víquez

Docente e investigadora de la Sección de Micología Médica, Facultad de Microbiología, Universidad de Costa Rica

Citas

Escandón P, de Bedout C, Lizarazo J, Agudelo CI, Tobón A, Bello S, et al. Cryptococcosis in Colombia: Results of the national surveillance program for the years 2006-2010. Biomédica 2012; 32: 386-98.

Bonifaz A. Micología Médica Básica. 4ta ed. México DF: Editorial McGraw-Hill Interamericana; 2012.

Cogliati M. Global Molecular Epidemiology of Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii: An Atlas of the Molecular Types. Scientifica 2013;2013:675213. https://doi.org/10.1155/2013/675213

Chen SC, Meyer W, Sorrell TC. Cryptococcus gattii Infections. Clin Microbiol Rev. 2014;27(4),980-1024. https://doi.org/10.1128/CMR.00126-13

Sosa MA, Rojas F, Mangiaterra M, Giusiano G. Prevalencia de especies de Malassezia asociadas a lesiones de dermatitis seborreica en pacientes de Argentina. Rev Iberoam Micol 2013; 30: 239-42. https://doi.org/10.1016/j.riam.2013.02.002

Jaikel-Víquez D, Uribe-Lorío L, Gross NT. Tipificación molecular y susceptibilidad in vitro frente a fluconazol de aislamientos clínicos costarricenses del complejo Cryptococcus neoformans/Cryptococcus gattii. Rev Panam Enf Inf. 2018;1(1):12-20.

Brizendine KD, Baddley JW, Pappas PG. Predictors of mortality and differences in clinical features among patients with cryptococcosis according to immune status. PLoS ONE 2013; 8(3): e60431. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0060431

Heitman J, Kozel TR, Kwong-Chung KJ, Perfect JR, Casadevall A. Cryptococcus from human pathogen to model yeast. Washington DC, U.S.A.: ASM Press; 2011

Fang W, Fa Z, Liao W. Epidemiology of Cryptococcus and cryptococcosis in China. Fungal Genet Biol. 2015;78,7-15. https://doi.org/10.1016/j.fgb.2014.10.017

Refojo N, Perrotta D, Brudny M, Abrantes R, Hevia AI, Davel G. Isolation of Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii from trunk hollows of living trees in Buenos Aires City, Argentina. Med Micol. 2015; 47,177-184. https://doi.org/10.1080/13693780802227290

Trilles L, Fernandez-Torres B, dos Santos M, Wanke B, Guarro J. In Vitro Antifungical susceptibility of Cryptococcus gattii. J Clin Microbiol. 2004;42(10),4815-17. https://doi.org/10.1128/JCM.42.10.4815-4817.2004

Meyer W, Castañeda A, Jackson S, Huynh M, Castañeda E, IberoAmerican Cryptococcal Study Group. 2003. Molecular typing of Iberoamerican Cryptococcus neoformans isolates. Emerg Infect Dis. 2003;9,189-95.

Illnait-Zaragozi MT, Martinez-Machin GF, Fernandez-Andreu CM, Perurena-Lancha MR, Hagen F, Meis J. Cryptococcus and criptococcosis in Cuba. A minireview. Mycoses. 2014;57, 707-17. https://doi.org/10.1111/myc.12275

Sánchez S, Zambrano D, García M, Bedoya C, Fernández C, Illnait-Zaragozí MT. Caracterización molecular de los aislamientos de Cryptococcus neoformans de pacientes con HIV, Guayaquil, Ecuador. Biomédica. 2017; 37, 425-30.

Olivares LR, Martinez KM, Cruz RM, Rivera MA, Meyer W, Espinoza RA, et al. Genotyping of Mexican Cryptococcus neoformans and C gattii isolates by PCR-fingerprinting. Med Mycol. 2009;47, 713-21.

Bejar V, Tello M, Garcia R, Guevara JM, Gonzales S, Vergaray G, et al. Molecular characterization and antifungal susceptibility of Cryptococcus neoformans strains collected from a single institution in Lima, Peru. Rev Iberoam Micol. 2015;32(2), 88-92. https://doi.org/10.1016/j.riam.2014.01.005

Chan M, Lye D, Win MK, Chow A, Barkham T. Clinical and microbiological characteristics of cryptococcosis in Singapore: predominance of Cryptococcus neoformans compared with Cryptococcus gattii. Int J Infect Dis. 2014;26,110-5. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2014.05.019

Sorrell TC. Cryptococcus neoformans variety gattii. Med Micol. 2011;39, 155-68.

Meyer W, Trilles L. Genotyping of the Cryptococcus neoformnas/ C. gattii Species Complex. Australian Biochemist 2010; 41(1): 12-6.

Ngamskulrungroj P, Gilgado F, Faganello J, Litvintseva AP, Leal AL, Tsui KM, Mitchell TG, Vainstein MH, Meyer W. 2009. Genetic diversity of the Cryptococcus species complex suggests that Cryptococcus gattii deserves to have varieties. PLOS ONE. 2009;4(6). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0005862

Galanis E, MacDougall L, Kidd S, Morshed M. Epidemiology of Cryptococcus gattii, British Columbia, Canada, 1999-2007. Emerg Infect Dis. 2010;16(2), 251-7. https://doi.org/10.3201/eid1602.090900

Bartlett KH, Cheng P, Duncan C, Galanis E, Hoang L, Kidd S, Lee M, Lester S, MacDougall L, Mak S, Morshed M, Taylor M, Kronstad J. A Decade of Experience: Cryptococcus gattii in British Columbia. Mycopathologia. 2012;173, 311-9. https://doi.org/10.1007/s11046-011-9475-x

Loperena- Alvarez Y, Ren P, Li X, Bopp DJ, Ruiz A, Chatuverdi V, Rios-Velazquez C. Genotypic Charcaterization of Enviromental Isolates of Cryptococcus gattii from Puerto Rico. Mycopathologia. 2010;170,279-85. https://doi.org/10.1007/s11046-010-9296-3

Harris JR, Lockhart SR, Debess E, Marsden-Haug N, Goldoft M, Wohrle R, Lee S, Smelser C, Park B, Chiller T. Cryptococcus gattii in the United States: Clinical aspects of infection with an emerging pathogen. Clin Infect Dis. 2011;53(12),1188-95. https://doi.org/10.1093/cid/cir723

Byrnes EJ, Li W, Ren P, Lewit Y, Voelz K, Fraser JA, Dietrich FS, et al. A Diverse Population of Cryptococcus gattii Molecular Type VGIII in Souther California HIV/AIDS Patients. PLOS Pathog. 2011;7(9)e1002205. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1002205

Litvintseva AP, Thakur R, Reller LB, Mitchell TG. Prevalence of Clinical Isolates of Cryptococcus gattii Serotype C among Patients with AIDS in Sub-Saharan Africa. J Infect Dis;2005;192(5), 888-92.

McTaggart L, Richardson SE, Seah C, Hoang L, Fothergill A, Zhang SX. 2011. Rapid identification of Cryptococcus neoformans var. grubii, C. neoformans var. neoformans, and C. gattii by use of rapid biochemical test, differential media and DNA sequencing. J Clin Microbiol. 2011;49(7), 2522-7. https://doi.org/10.1128/JCM.00502-11

Publicado
2020-08-25
Sección
Artículos Originales